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TECHNICAL ARTICLES大豆是蛋白質(zhì)和多種微量營養(yǎng)素的重要來源,并富含大豆異黃酮、大豆甾醇等活性物質(zhì),具有較低的血糖指數(shù)與較高飽腹感特性[1]。但大豆中還含有多種抗?fàn)I養(yǎng)因子,包括胰蛋白酶抑制劑(TI)、植酸、單寧、皂甙等。本文利用分光光度法探究大豆不同制漿方法對抗?fàn)I養(yǎng)因子含量的影響,為豆?jié){制作方法選擇建立依據(jù)。
一、材料與方法
1、材料及試劑
大豆、單寧酸、植酸鈉、齊墩果酸、牛胰蛋白酶、沒食子酸、F-D試劑、碳酸鈉、硫酸鈉、鹽酸、三氯化鐵、磺基水楊酸、氯化鈉、氫氧化鈉、乙酸、乙醇、正丁醇、甲醇、高氯酸、乙酸乙酯、香草醛、氯化鈣、Tris-base,F(xiàn)-C試劑,苯甲酰-DL-精氨酸-p-對硝基苯胺鹽酸鹽(L-BApNA),201×7(717)強堿性苯乙烯系陰離子交換樹脂
2、儀器與設(shè)備
離子交換柱(ф8mm×10mm),JYDZ-35九陽豆?jié){機,電子天平,離心機,pH酸度計,UV-5200型紫外可見分光光度計(上海元析儀器有限公司),旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,水浴恒溫振蕩器,電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱,真空冷凍干燥機等。
3、方法
3.1豆?jié){制作方法
按市售豆?jié){蛋白質(zhì)含量約為2%的濃度,確定豆?jié){的豆水比為 1:20。浸泡組、干豆組、炒制組、 發(fā)芽組共4種豆?jié){制作處理方式如下:
干豆組:稱取50.0g大豆,倒入豆?jié){機,加水1000mL,制漿程序完成后濾網(wǎng)過濾分離得豆?jié){。
浸泡組:稱取50.0g大豆,加水300mL于室溫條件下分別浸泡4h,8h,12h,置于冰箱冷藏(4℃)條件下浸泡12h。浸泡結(jié)束后,棄去浸泡水,用吸水材料將大豆表面水分吸干后稱量并計算其吸水量,然后補加水至1000mL,倒入豆?jié){機后制作豆?jié){。另取一份50.0g大豆經(jīng)過相同方式浸泡后將浸泡水與大豆分離,保留浸泡水測定其抗?fàn)I養(yǎng)因子含量。
炒制組:稱取大豆250.0g,130℃炒制30min。測定其失水量后,稱取與50.0g未炒制大豆等干物質(zhì)含量的炒制大豆,倒入豆?jié){機,其后制作方法同干豆組。
發(fā)芽組:稱取50.0g大豆,加水300mL,30℃浸泡8h后,除去浸泡水后置于遮光處30℃條件下發(fā)芽2d,期間每4h淋水一次,發(fā)芽結(jié)束時芽長平均約為1.5cm。吸干表面水分后,加水1000mL,倒入豆?jié){機,其后制作豆?jié){方法同干豆組。
另取干豆,室溫浸泡 4h,8h,12h,冷藏浸泡12h后的大豆,炒制后大豆以及發(fā)芽后大豆進(jìn)行冷凍干燥處理并磨粉過100目篩,以測定其中抗?fàn)I養(yǎng)因子含量。所有樣品的抗?fàn)I養(yǎng)因子保存率按干豆基進(jìn)行比較。
3.2主要測定方法
3.2.1單寧含量的提取及測定
豆?jié){與泡豆水直接用1mol/L鹽酸調(diào)整pH值至4.5±0.1,等電點沉淀大豆蛋白,1500r/min 離心10min,收集上清液進(jìn)行測定。另分別稱取豆渣5.000g 和過100目篩豆粉5.000g,加入去離子水400mL,80℃水浴振蕩提取1h,后續(xù)步驟同豆?jié){處理。采用F-D試劑法[2],在680nm 比色測定吸光度。使用單寧酸作為標(biāo)準(zhǔn)試劑,得到回歸方程為 y=2.5619x+0.0064,R2 =0.9995。
3.2.2植酸的提取與測定
分別量取豆?jié){和泡豆水20 mL置于具塞三角瓶中,加入50mL硫酸鈉-鹽酸提取溶液,振蕩提取2h 后,3000r/min 離心10 min,收集上清液,按照國標(biāo)[3]方法,經(jīng)陰離子交換柱洗脫提取,收集提取液,在500nm 比色測定吸光度。另取豆渣2.000g 和過100目篩豆粉1.000g,提取方式同豆?jié){處理過程。使用植酸鈉作為標(biāo)準(zhǔn)試劑,得到植酸含量與吸光度的回歸方程為 y=-1.165x+0.9427,R2 =0.9995。
3.2.3皂甙的提取與測定
分別量取豆?jié){與泡豆水20 mL于250 mL三角瓶中,加入75%乙醇100 mL,按照楊秀麗[4]等人方法進(jìn)行提取、純化,以5%香草醛-冰醋酸溶液和高氯酸為顯色劑,在乙酸乙酯中反應(yīng),558 nm 處測定吸光度。豆粉、豆渣處理過程同豆?jié){。使用齊墩果酸為標(biāo)準(zhǔn)品,得到齊墩果酸量和吸光值的回歸方程: y=0.0104x+0.0123。R2=0.9996。
3.2.4胰蛋白酶抑制劑的提取與測定
牛胰蛋白酶放置至室溫,精密稱1.0000g于200mL容量瓶中,用氯化鈣鹽酸溶液溶解并定容至刻度。將胰蛋白酶儲備液分別稀釋為0.5、1.0、1.5、2.0、2.5mg/mL五個濃度,按照國標(biāo)[5]方法測定吸光度,得到標(biāo)準(zhǔn)曲線,其回歸方程為 y=0.1865x+0.0081,R2=0.9999。為保證胰蛋白酶吸光度值為0.380±0.050,得到胰蛋白酶濃度應(yīng)為1.82-2.38mg/mL,本實驗選取2.0mg/mL。
量取豆?jié){1 mL,加入Tris-氯化鈣溶液50mL,于25℃恒溫水浴中150r/min 振蕩提取2h,3000 r/min離心,取上清液按照不同稀釋度進(jìn)行實驗。豆粉與豆渣處理過程同豆?jié){。將提取液與胰蛋白酶使用液、L-BApNA進(jìn)行反應(yīng),410nm波長處測定吸光度,按照國標(biāo)所列公式計算樣品提取液的抑制百分率和胰蛋白酶抑制劑活性。
3.2.5總多酚的提取與測定
分別量取豆?jié){和泡豆水10mL,加入50%丙酮10mL,40℃水浴振蕩提取4h,用1mol/L鹽酸調(diào)整pH值至4.5±0.1,等電點沉淀大豆蛋白,1500r/min 離心10min,收集上清液。豆粉、豆渣處理過程同豆?jié){。采用福林-酚法[6],在765nm處測定其吸光度值。總酚含量以沒食子酸當(dāng)量表示(mg沒食子酸/g),以沒食子酸為標(biāo)準(zhǔn)品,得到回歸方程為 y=0.00189x+0.0012,R2=0.9999。
4、數(shù)據(jù)處理與統(tǒng)計分析
各指標(biāo)的測定設(shè)3次重復(fù),每次重復(fù)平行測定3次,結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。用SPSS17.0軟件處理試驗結(jié)果,不同前處理方式間差異用單因素方差分析,因素之間的相關(guān)分析采用Pearson 相關(guān)分析,以P<0.05為顯著性差異。
二、實驗結(jié)果與分析
1、原料前處理方式對豆?jié){產(chǎn)量的影響
大豆以不同方式進(jìn)行前處理后,按照豆?jié){機標(biāo)準(zhǔn)程序制作豆?jié){,使用豆?jié){機配套網(wǎng)篩分離豆?jié){與豆渣,測定豆?jié){體積與豆渣干重,結(jié)果如表1所示。
2、未經(jīng)前處理大豆及制作豆?jié){中抗?fàn)I養(yǎng)因子含量
大豆中的抗?fàn)I養(yǎng)因子含量根據(jù)品種、產(chǎn)地、灌溉條件及年份的不同而具有差異[7],本實驗中所用大豆中抗?fàn)I養(yǎng)因子含量如表2所示。
3、浸泡對大豆及其制作豆?jié){中抗?fàn)I養(yǎng)因子含量的影響
不同時間及溫度去離子水浸泡后的大豆、泡豆水,浸泡后大豆制作的豆?jié){、豆渣中的抗?fàn)I養(yǎng)因子含量如表3所示。
4、炒制對大豆及其制作豆?jié){中抗?fàn)I養(yǎng)因子含量的影響
經(jīng)過炒制后大豆及其制作的豆?jié){、豆渣中的抗?fàn)I養(yǎng)因子含量如表4所示。
5、發(fā)芽對大豆及其制作豆?jié){中抗?fàn)I養(yǎng)因子含量的影響
經(jīng)過發(fā)芽后大豆及其制作豆?jié){、豆渣中抗?fàn)I養(yǎng)因子含量如表5所示。
三、結(jié)論
本文采用分光光度法研究不同大豆預(yù)處理方法對豆?jié){抗?fàn)I養(yǎng)因子含量影響,研究結(jié)果表明與干豆制漿相比,各處理均顯著降低了豆?jié){中抗?fàn)I養(yǎng)因子的保存率,其中大豆經(jīng)發(fā)芽2d處理后制作豆?jié){,對各種抗?fàn)I養(yǎng)因子的消除效果最為顯著,浸泡效果次之。對身體缺乏礦物質(zhì)或消化吸收能力較弱的人,用浸泡或發(fā)芽處理的大豆制作豆?jié){,可能有利于改善營養(yǎng)素的吸收利用。
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文章內(nèi)容來源于:史海燕,范志紅,魏嘉頤.不同預(yù)處理對家庭制豆?jié){抗?fàn)I養(yǎng)因子含量的影響[J].食品科學(xué),2011,32(17):49-54.
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